大鼠脊髓后索及脊神经结病理标本取材方法(脊髓,大鼠,病理标本,脊神经) - 动物实验 - 生物秀
标题: 大鼠脊髓后索及脊神经结病理标本取材方法(脊髓,大鼠,病理标本,脊神经)
摘要: [大鼠脊髓后索及脊神经结病理标本取材方法(脊髓,大鼠,病理标本,脊神经)] 急切求助大鼠脊髓后索及脊神经结病理标本取材方法。 关键词:[脊髓 大鼠 病理标本 脊神经]……
急切求助大鼠脊髓后索及脊神经结病理标本取材方法。
本人没有做过单独后索的标本，不过做过不少脊髓的标本。方法如下，希望能给楼主一点帮助。在动物取材时，如果是比较娇嫩的组织，如脑、脊髓、内耳及视网膜等，一般建议采用灌注法固定，即通过血管将固定液灌注到所要固定的组织中。通常采用的固定剂为2%～4%戊二醛溶液或者4%多聚甲醛溶液。灌注途径，一般大动物可通过动脉或静脉导管灌注，小动物可直接用注射针插入心室或主动脉。在固定前先用生理盐水把血液冲净，然后再进行灌注固定。本人的方法如下：将大鼠用水合氯醛腹腔注射麻醉，剪开胸腔，将灌流套管金属钝性头部由左心室插入主动脉并固定，灌注同时剪开右心耳放血。先用0.01 mol/L PBS快速灌注3 min(约200 ml)；立刻换4%多聚甲醛前固定液灌注5 min(约200 ml)。灌注后即解剖取出完整脊髓组织，放入4%多聚甲醛内后固定(＞24h)，放入前记得剥去脊膜和血凝块。择日将脊髓损伤中心段组织(约2mm)取出进行常规石腊包埋并切片（如果是做冰冻切片则固定后用梯度蔗糖分别脱水至组织沉底）至于如何取出脊髓，本人是采用眼科用的钳子，比较小，可以将脊髓外的骨性物质去掉而不伤害脊髓。
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【方法经验】有没有做过大鼠悬尾实验的，求指导
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这个帖子发布于2年零131天前，其中的信息可能已发生改变或有所发展。
做大鼠悬尾实验的时候发现不好粘住大鼠尾巴，而且大鼠会拼命打转挣脱，或者攀爬自己的尾巴，请问有没有人做成功的，该怎么操作？？？ 求大神指导
不知道邀请谁？试试他们
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大鼠一般不做悬尾实验，放弃吧。
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psydyh 大鼠一般不做悬尾实验，放弃吧。我在文献里面见过介绍的，说弄了个什么装置可以防止这种现象，但是没有图
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我也遇到了上面的情况，请问楼主怎么处理的？
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